1 ? 對于環(huán)境樣品含有太多雜質(zhì)（泥沙、唾液樣品里面含有飼料雜質(zhì)）會對結(jié)果產(chǎn)生多大影響？是否可以在裂解之前對樣品進(jìn)行離心一次？這種離心操作會對檢測結(jié)果產(chǎn)生影響嗎？
對于雜質(zhì)較多的樣本，建議在提取前進(jìn)行離心，取上清液進(jìn)行提取，盡量不要取到其他雜質(zhì)。如果含有過多雜質(zhì)，對于磁珠法試劑盒，有可能會對核酸的純度有影響，比如洗脫液有顏色的情況；對于柱式法試劑盒，有可能會出現(xiàn)純化柱被堵塞的情況。樣品前處理環(huán)節(jié)進(jìn)行離心，不會對檢測結(jié)果產(chǎn)生影響。
2 ? 針對很臟的環(huán)境拭子樣品、精液樣品和痰液樣品有好的解決方案嗎？
樣本前處理要按說明書規(guī)范進(jìn)行，對于很臟的的環(huán)境拭子和精液樣本，建議先離心，取上清液或精清樣本進(jìn)行提?。惶狄簶颖?，可直接取樣進(jìn)行提取，若太粘稠，建議用生理鹽水或?qū)Ｓ脴颖鞠♂屢哼M(jìn)行稀釋后，再進(jìn)行提??；提取試劑盒的選擇：建議選擇裂解效果好、提取效率高的病毒核酸提取試劑盒。
3 ? 純化柱法提取核酸時，尤其是提取血液時，純化柱可能會被紅細(xì)胞堵塞，能否把原血液樣品離心一次，用血漿來檢測核酸嗎？
有數(shù)據(jù)顯示，同一份血液樣本，從全血樣本提取的Ct值要比從血清提取的Ct值要小。所以還是更推薦從全血樣本中進(jìn)行提取、檢測。對提取血液樣本會出現(xiàn)純化柱堵塞的現(xiàn)象，如果沒有取到血凝塊的話，初步分析是所用試劑盒對血液的裂解效果偏弱的原因。建議可以換一款裂解效果更好的試劑盒進(jìn)行提取，比較推薦明日達(dá)的病毒DNA提取試劑盒（V型）。這款試劑盒的裂解液和結(jié)合液均具有裂解作用，加之蛋白酶對蛋白的消化裂解的作用，可以很好地勝任各種血液樣本的提取，甚至是有凝血現(xiàn)象的全血。
4 ? 不同的樣品，是否需要采用不同的核酸提取方法？如環(huán)境樣品，血拭子等。
不同類型的樣本按照各自的前處理方式完成樣本前處理之后，可以采用同樣的核酸提取方法進(jìn)行提取。因為，一款合格的病毒核酸提取試劑盒應(yīng)該滿足各種不同樣本類型的提取。5 ? 油性疫苗如果要檢測非洲豬瘟病毒，有沒有好的前處理方法？
對于疫苗樣本，可以用生理鹽水進(jìn)行稀釋，也可以用專門的裂解液進(jìn)行稀釋處理，然后再進(jìn)行提取。
我們曾做過測試，用明日達(dá)的預(yù)分裝提取試劑盒對油性疫苗直接進(jìn)行提取，提取效果也是沒有問題的。
6 ? 樣本前處理時的離心對轉(zhuǎn)速和時間有沒有要求？
建議嚴(yán)格按照說明書進(jìn)行前處理。離心轉(zhuǎn)速和時間如果偏低，有些雜質(zhì)和殘渣可能離心不徹底，對于磁珠法有可能會影響純度，對于柱式法可能會造成柱膜堵塞。如果是轉(zhuǎn)速較低的掌上離心機(jī)，可延長離心時間。
7 ? 血清和環(huán)境離心多少轉(zhuǎn)速好，轉(zhuǎn)速高會不會對樣品蛋白質(zhì)有影響。
離心轉(zhuǎn)速建議按照說明書進(jìn)行，一般為8000-12000g離心5min。轉(zhuǎn)速過高一般不會對蛋白和病毒核酸有影響。
8 ? 樣品單檢與混檢有多大的區(qū)別？
混檢在日常病毒篩查檢測中發(fā)揮著重要的作用。從技術(shù)可行性角度進(jìn)行分析，通過對混樣檢測靈敏度的計算，采用5混1、10混1進(jìn)行混檢是切實可行的。新冠病毒的篩查檢測也是采用5混1、10混1或者20混1的方式進(jìn)行。（1）需提前預(yù)估待檢測豬場的陽性率，根據(jù)不同的陽性率來選擇不同數(shù)量的混檢形式，以減少復(fù)檢的次數(shù)；（2）要保證所用核酸提取試劑的提取效率以及PCR檢測試劑盒的檢測靈敏度，以免造成假陰性；（3）對混檢可能造成的漏檢風(fēng)險進(jìn)行評估，并制定相應(yīng)的風(fēng)險管控措施。9 ? 為什么會出現(xiàn)混合樣品陽性，單測出現(xiàn)陰性？
原因分析：1、混合樣品為弱陽，可能在復(fù)檢的過程中，樣品出現(xiàn)降解，分開單個樣品測試出現(xiàn)陰性；2、混合樣品檢測時，出現(xiàn)操作污染導(dǎo)致出現(xiàn)陽性。
10 ? 磁珠法在特殊樣本提取純度較差，是不是可以理解特殊樣本采用柱膜法更具優(yōu)勢呢？
這里提到的磁珠法提取特殊樣本差，是從技術(shù)研發(fā)的角度出發(fā)，磁珠法提取在保證樣本純度方面相較于柱式法會面臨更大的技術(shù)難題，如果磁珠選擇不好或者磁珠與提取體系的搭配不好，就會出現(xiàn)各種問題，比如洗脫液粘稠、有顏色等。但是難度大不代表不可實現(xiàn)。通過數(shù)據(jù)對比展示明日達(dá)和T公司的磁珠法試劑盒，都在樣本純度和提取效率方面達(dá)到了比較高的標(biāo)準(zhǔn)。
11 ? 柱式法病毒核酸提取可以做到不加蛋白酶K，那為什么還存在有蛋白酶K的版本？
我們的測試結(jié)果顯示，對于普通的正常狀態(tài)的樣本，無蛋白酶K的試劑盒和有蛋白酶K的試劑盒提取效率是一致的。但為了應(yīng)對一些狀態(tài)特別差的樣本，比如凝血嚴(yán)重的血液、特別粘稠的樣本，有蛋白酶K的試劑盒通過裂解液、結(jié)合液的雙重裂解+蛋白酶K的消化，使其對于狀態(tài)差樣本仍然可以保證較高的提取效率。
12 ? 您剛才展示了不同廠家產(chǎn)品提取效率比對數(shù)據(jù)，用的是你們自己的PCR擴(kuò)增試劑做的結(jié)果么？對其他廠家的PCR試劑盒在搭配上是否有開放性？
對于提取試劑盒，除了搭配明日達(dá)PCR試劑盒，也搭配過另外三款有批準(zhǔn)文號的PCR試劑盒，提取效率都是沒有問題的。至于我們公司的PCR試劑盒，很多實驗室都是在用其他家的核酸提取試劑盒，匹配性也是沒有問題的。也就是說，明日達(dá)的提取試劑盒和PCR試劑盒都是開放性的。
13 ? 柱式提取和磁珠法提取相比核酸回收率怎么樣？
各個生物試劑公司都有磁珠法試劑盒和柱式法試劑盒，但對各種樣本類型的提取性能還是存在差異的。但不能因為某些個別情況（比如，A公司的磁珠法試劑盒比B公司的柱式法試劑盒提取效率低）就斷定柱式法和磁珠法的核酸回收率，哪種方法更好一些。其實，從方法學(xué)上來看，柱式法和磁珠法都是比較成熟的方法。所以，比較優(yōu)秀的柱式法試劑盒和磁珠法試劑盒的核酸回收率都會是比較高的。
14 ? 不用裂解液的試劑會出現(xiàn)什么情況。
不用裂解液，直接從結(jié)合開始進(jìn)行提取，提取效果肯定是不好的。有的核酸提取試劑盒中沒有裂解液這一個組分。其實這種試劑盒是需要搭配他們公司的病毒保存液進(jìn)行使用的，這里的病毒保存液既有保存病毒的作用，又有裂解病毒的作用，所以用這種核酸提取試劑盒一定要搭配與其相匹配的病毒保存液。
15 ? 樣品提取結(jié)束后，向離心管中轉(zhuǎn)移提取后樣品，樣品中含有少量磁珠，對后續(xù)的檢測是否有影響。
如果將磁珠加入到PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系中，肯定會對PCR的檢測產(chǎn)生影響，通常會出現(xiàn)擴(kuò)增曲線異常，導(dǎo)致檢測失敗。建議將核酸洗脫液進(jìn)行瞬離，取上清進(jìn)行PCR檢測，切勿取到磁珠。
16 ? PCR樣本初始背景熒光值就很高，樣本也要離心很久，這該怎么解決呢？
背景熒光值高的原因：⑴、樣本的本身含有熒光物質(zhì)：樣本的成分不同，血液，組織，環(huán)境，尤其是環(huán)境樣本，成分更為復(fù)雜，且不同樣本中不同成分的占比也不同，自然界幾乎所有的物質(zhì)都是可以“發(fā)光”的，只是發(fā)光的強(qiáng)弱不同，所以部分樣本的某些組分或雜質(zhì)有比較強(qiáng)的熒光物質(zhì)，所以導(dǎo)致背景熒光值高；⑵、樣本中含有能夠被PCR儀激發(fā)后發(fā)光的物質(zhì)：熒光PCR儀的檢測原理是靠激發(fā)光激發(fā)檢測試劑盒里的熒光探針發(fā)光從而測試靶標(biāo)濃度的，基礎(chǔ)熒光值高可能跟樣本中含有某種物質(zhì)，這種物質(zhì)受到機(jī)器的激發(fā)波后，就會發(fā)出熒光，導(dǎo)致初始的背景熒光值升高。
那么知道背景熒光值高的原因后，我們可以對癥治療：⑴、選擇高質(zhì)量的核酸提取試劑產(chǎn)品：核酸提取能夠去除絕大部分雜質(zhì)，同時能夠濃縮DNA，所以經(jīng)過核酸提取后再進(jìn)行檢測是能夠有效降低基質(zhì)干擾的；⑵、核酸提取后仍然有熒光物質(zhì)，最好就是進(jìn)行小倍數(shù)的稀釋，比如3倍或5倍稀釋，這樣就可以盡量不影響靈敏度的情況下，降低雜質(zhì)或基質(zhì)的干擾。17 ? PCR擴(kuò)增時，原始曲線正常，但是擴(kuò)增曲線會顯示異常，這是什么情況？
原始曲線正常，而擴(kuò)增曲線異常，初步判斷，可能是PCR儀器計算方式不同導(dǎo)致的，需要具體看PCR曲線再進(jìn)行具體分析。
